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柱式动物RNA提取试剂盒图片
产品货号:
YTB4006
中文名称:
柱式动物RNA提取试剂盒
英文名称:
RNasy II Animal RNA Isolation Kit with Spin Column
产品规格:
50次
发货周期:
1~3天
产品价格:
询价

本制品是一种基于离心柱法从动物组织或培养的动物细胞中安全、快速、便捷、稳定、高效、高质量地提取总RNA的试剂盒。总RNA包括大于200个核苷酸的RNA(也常被称为总RNA)和小于200个核苷酸的小RNA(small RNA)。


本试剂盒适用于新鲜或冻存的动物组织或细胞总RNA与小RNA的提取,推荐的细胞用量为50~100万,组织用量为3~5mg。




本试剂盒提取得到的RNA可用于反转录、RT-PCR、qPCR、Northern、点杂交(Dot Blot)、纯化mRNA、体外翻译、RNase protection assay、cDNA克隆等下游实验;也可用于基因表达芯片分析(microarray)、高通量测序等对RNA质量要求较高的情况。




  • 本试剂盒使用安全。本试剂盒通过特殊的柱纯化介质进行总RNA分离纯化,能有效避免传统的Trizol法提取时使用的酚、氯仿等有毒有害有机试剂。
  • 本试剂盒使用快速、便捷。本试剂盒采用柱纯化,无需繁琐的RNA沉淀步骤,提取操作过程仅25~30分钟。相比于传统的Trizol提取法,本试剂盒的操作流程显著简化,缩短了提取时间,降低了RNA降解的风险。
  • 本试剂盒提取总RNA的得率高。本试剂盒的提取效果经反复测试,100万个冻存的HeLa细胞能提取得到约15~20μg总RNA,5mg冻存的小鼠肝组织能提取得到约6~10μg总RNA,5mg冻存的小鼠肾组织能提取得到约3~5μg总RNA。不同来源的样品可能有所差异,通常新鲜样品的得率高于冻存样品。
  • 本试剂盒提取得到的总RNA纯度高,显著优于Trizol方法。提取得到的总RNA的A260/A280通常为2.0-2.2。A260/A230通常为1.9-2.1。本试剂盒提取获得的RNA的实测纯度参见图1。



柱式动物RNA提取试剂盒
图1.本试剂盒总RNA提取效果。样品为冻存的50万个HeLa细胞、5mg小鼠肝组织和5mg小鼠肾组织。洗脱液用量均为40μL。均取6μL洗脱的样品经变性处理后,在含6.67%甲醛和适量NadRed的1.2%变性琼脂糖凝胶中电泳约45分钟后拍照。提取产物的得率依次为9.6μg、8.5μg和4.1μg,A260/A280依次为2.11、2.10和2.09,A260/A230依次为2.01、1.98和1.94。实际提取效果会因实验条件、检测仪器等的不同而存在差异,本图仅供参考。
注:纯的RNA其A260/A280约为2.0,但在很多仪器上测定时会高于2.0,低于1.9通常认为有蛋白、DNA或者酚等的污染;纯的RNA其A260/A230约为2.0左右或者略高,低于1.9通常认为有碳水化合物、胍盐、多肽或酚等的污染。


动物组织或细胞中的RNA按照长度可以分为长链RNA(long RNA)和小RNA(small RNA),长链RNA通常大于200nt,而小RNA通常小于200nt。长链RNA按照是否编码蛋白或多肽可以分为长链非编码RNA(lncRNA)和mRNA。小RNA主要包括非编码的5.8S rRNA(ribosomal RNA)、5S rRNA、tRNA(transfer RNA)、microRNA(miRNA)、siRNA、piRNA、tsRNA、srRNA等。




组分规格
裂解液16mL
结合液I16mL
结合液II38mL
洗涤液I32mL
洗涤液II63mL
洗脱液5mL
RNA纯化柱及废液收集管50套
RNA洗脱管50个

保存:室温,有效期1年。


本试剂盒提取总RNA的基本流程如图2所示。样品在裂解液中迅速裂解,释放出总RNA与小RNA,通过两次特异性结合体系过同一纯化柱,分别结合>200nt的RNA和<200nt的小RNA,同时有效避免了杂质大量析出而阻塞纯化柱,提取得到包括>200nt的RNA和小RNA的总RNA,基因组DNA和蛋白等杂质被有效去除,然后通过洗涤去除非特异性结合的蛋白等杂质,最后用洗脱液将总RNA洗脱下来。


柱式动物RNA提取试剂盒
图2.离心柱式总RNA(>200nt的RNA和<200nt的小RNA)提取流程示意图。


  • 对于富含RNase的样品(如动物组织),建议使用前在裂解液中添加二硫苏糖醇(DTT)至终浓度为40mM (例如1mL裂解液中加入20μL 2M DTT)或β-巯基乙醇至终浓度为1% (如1mL裂解液中加入10μL β-巯基乙醇),含DTT或β-巯基乙醇的裂解液可在室温放置1个月。
  • 通过本试剂盒提取得到的RNA已经去除绝大多数DNA,通常情况无需DNase处理。后续如进行某些对DNA残留较敏感的实验,则需要在使用说明中步骤5离心后,在纯化柱中加入适量DNase I进行消化,具体请参考使用说明。
  • 本试剂盒提供的所有试剂和耗材都是RNase-free,操作时应小心,避免被污染。所有自行准备的试剂和耗材也都应是RNase-free。如果可能有RNase污染,可考虑用0.01%的DEPC水浸泡过夜,然后高温高压灭菌并烘干。操作时应避免对着样品或所使用的试剂盒耗材呼气或说话,以防RNase污染。建议戴一次性口罩操作。
  • 对于操作环境中RNA酶的去除,推荐使用核酸酶喷雾清除剂(货号:YT400)以去除实验桌面上或其它接触面上的RNase。
  • 使用冻存的细胞或组织提取RNA的效果通常比新鲜的细胞或组织差一些。因为在细胞或组织冻融过程中一些细胞或组织内的RNase会被释放出来并剪切样品中的RNA。对于组织样品,推荐使用动物组织RNA保存液(货号:YTB4010)进行保存以保证样品RNA的完整性。
  • 本试剂盒所有操作均在室温进行,操作时无需冰浴。所有离心也均在室温进行。
  • 废液收集管在一次提取中需多次使用,切勿中途丢弃。
  • 结合液I、II和洗涤液II中含有乙醇,使用后须旋紧瓶盖以防挥发,并须按照易燃试剂的相关规范进行存放和使用。



  • 实验材料的准备,与样品的裂解。
    • 细胞样品:收集50~100万左右的细胞。对于悬浮细胞,1000~2000×g离心1分钟后弃上清,加入300μL裂解液,轻轻吹打8~10次至固悬物溶解、溶液澄清;对于贴壁细胞,吸净培养液后加入300μL裂解液,轻轻吹打5~10次至固悬物溶解、溶液澄清,转移至一洁净离心管内。
    • 组织样品:取3~5mg动物组织,置于液氮中研磨成粉末,立即加入300μL裂解液。也可将组织置于1.5mL离心管中,迅速加入300μL裂解液,用微型电动匀浆器匀浆,或者用普通玻璃匀浆器进行匀浆。研磨或匀浆后,轻轻吹打匀浆液8~10次,室温放置3~5分钟。然后约14000×g离心2分钟,将上清液移至新的离心管中。对于比较容易裂解且匀浆很充分的组织(如肝组织、脑组织等)可以不用高速离心而直接进入步骤2。
    • 细胞的数量一般不超过200万,动物组织的用量一般不超过10mg,用量过多可能会因裂解不充分导致得率下降。如果裂解后仍有粘稠物,需增加吹打次数至溶液完全澄清。对于富含RNase的样品,裂解液中宜添加DTT至终浓度为40mM或添加β-巯基乙醇至终浓度为1%。
  • 加入300μL结合液I至裂解液中,轻轻颠倒混匀3~5次。此时可能会有沉淀物产生,属于正常现象。
  • 将混合物(包括沉淀物)转移至纯化柱内,12000×g离心30秒,回收收集管内液体至一新的1.5mL离心管。
    • 对于一些特殊的样品,如出现溶液未完全通过时,可延长离心时间至1~2分钟,或者加大离心力至16000×g。对于一些能快速启动达到12000×g的离心机,离心30秒已经足够,对于一些启动速度缓慢的离心机本步骤及后续步骤中的30秒离心宜调整为60秒。
  • 向回收的液体中加入700μL结合液II,混匀后,将混合物(包括沉淀物)分两次通过上一步的纯化柱,每次12000×g离心30秒后倒弃收集管内液体。
    • 加入结合液II后溶液总体积超过纯化柱的容量(约750μL),因此须分成2次过柱,即将一半的混合物(约650μL)加入纯化柱内后12000×g离心30秒,倒弃收集管内液体,再将剩余的混合物加入纯化柱内12000×g离心30秒,并倒弃收集管内液体。
  • 加入600μL洗涤液I,12000×g离心30秒,倒弃收集管内液体。选做:通过本试剂盒提取得到的RNA已经去除绝大多数DNA,通常情况无需DNase处理。后续如进行某些对DNA残留较敏感的实验时,可在本步骤离心后,在纯化柱中加入80μL含10U DNase I的酶溶液(推荐使用DNase I溶液,货号:YT411,每80μL酶溶液按照71.8μL水加8μL 10×Reaction Buffer再加0.2μL 50U/μL DNase I混合配制而成),室温放置消化15分钟。消化结束后,不需要进行离心等任何额外的操作,直接进入步骤6。
  • 加入600μL洗涤液II,12000×g离心30秒,倒弃收集管内液体。
  • 重复步骤6一次。
  • 最高速(约14000~16000×g)离心2分钟,去除残留的液体。
  • 将RNA纯化柱置于一新的本试剂盒中提供的1.5mL RNase-free离心管上,加入30~50μL洗脱液,室温放置2~3分钟,最高速离心30秒,所得溶液即为纯化的总RNA。
    • 洗脱液需要加到纯化柱柱面中央,使其被完全吸收。如需获得更高浓度的样品,可把洗脱液的体积减小至20μL,但洗脱下来的总RNA量会相对减少。室温较低时,洗脱液在37℃预热片刻对得率有所帮助。此外,洗脱后的溶液再次加回到原纯化柱再离心洗脱一次,可提高得率约10~30%;或者在第一次洗脱后使用新的洗脱液再洗脱一次,会获得约为第一次洗脱量15~35%的RNA。

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